Uniwersytet Medyczny w Lublinie

Działalność dydaktyczna Zakładu obejmuje: wykłady i ćwiczenia z chemii analitycznej (metody klasyczne i metody instrumentalne) dla studentów II roku farmacji, wykłady i ćwiczenia z chemii analitycznej (metody klasyczne) dla I roku analityki medycznej oraz wykłady i ćwiczenia z analizy instrumentalnej dla studentów II roku analityki medycznej. Odbywają się również seminaria  z obliczeń w chemii analitycznej oraz walidacji metod analitycznych. Ponadto w Zakładzie prowadzone są zajęcia w języku angielskim dla studentów zagranicznych na kierunku lekarskim (Pre-Medical Course) oraz prace magisterskie studentów farmacji i analityki medycznej (rocznie ok. 10 prac).

Badania naukowe w Zakładzie Chemii Analitycznej prowadzone są w 2 zespołach badawczych:

1. I. Zespół pod kierunkiem prof. dr hab. Ryszarda Kocjana:
   1. Synteza, badania i zastosowanie sorbentów chelatujących w technikach ekstrakcji do fazy stałej (SPE) i wysokosprawnej Chromatografii jonowej (HPIC).
   2. Chromatograficzna analiza jakościowa i ilościowa jonów metali ciężkich.
   3. Badanie właściwości adsorbentów stosowanych w chromatografii jonowej.
   4. Różne techniki mineralizacji próbek do celów analizy jonów metali ciężkich.
   5. Chromatografia jonowa z zastosowaniem różnych eluentów.
   6. Badanie zawartości metali ciężkich w tkankach roślinnych i ludzkich.
      1. Dr Eliza Blicharska:
         Badanie zawartości metali ciężkich w roślinach leczniczych i preparatach ziołowych metodami chromatografii jonowej oraz atomowej spektrometrii absorpcyjnej. Różne techniki mineralizacji ze szczególnym uwzględnieniem mineralizacji mikrofalowej.
      2. Dr Anna Błażewicz:
         Zastosowanie różnych metod analitycznych w analizie próbek biologicznych oraz klinicznych. Przygotowanie próbek o złożonych matrycach do analizy HPIC. Oznaczanie substancji biologicznie aktywnych oraz pierwiastków śladowych w płynach ustrojowych oraz tkankach. Badanie interakcji międzypierwiastkowych w odniesieniu do różnych schorzeń. Walidacja metod analitycznych.
      3. Dr Magdalena Wójciak-Kosior:
         Opracowanie metod rozdzielania i identyfikacji związków biologicznie aktywnych o charakterze triterpenów z zastosowaniem HPTLC w połączeniu z densytometrią oraz HPLC. Optymalizacja procesu izolacji pochodnych triterpenów z surowców roślinnych.
      4. Dr Ireneusz Sowa:
         Otrzymywanie i badanie właściwości faz stacjonarnych stosowanych w metodach rozdzielczych. Zastosowanie HPLC i HPIC w organicznej i nieorganicznej analizie śladowej w różnych materiałach biologicznych. Optymalizacja procesu izolacji związków aktywnych z surowców roślinnych. Analiza elementarna próbek biologicznych.
      5. Dr Agnieszka Skalska-Kamińska:
         Opracowanie rozdzielania substancji aktywnych biologicznie z materiałów roślinnych metodą chromatografii cieczowej i cienkowarstwowej. Identyfikacja ciał czynnych w materiale roślinnym.
      6. Mgr Wojciech Szwerc:
         Analiza pierwiastkowa próbek różnego pochodzenia metodą atomowej spektrometrii absorpcyjnej. Synteza i badanie właściwości faz stacjonarnych stosowanych w technikach rozdzielczych.
2. Zespół pod kierunkiem dr hab. Jolanty Flieger:
   1. Wyznaczanie chromatograficznych parametrów lipofilowości oraz badania zależności pomiędzy lipofilowością i aktywnością biologiczną substancji leczniczych.
   2. Analiza chromatograficzna TLC i HPLC nowosyntetyzowanych związków organicznych o potencjalnej aktywności farmakologicznej.
   3. Modyfikowanie układów chromatograficznych za pomocą imidazolowych cieczy jonowych.
   4. Wodne układy dwufazowe (ABS) oparte na cieczach jonowych jako nowe układy ekstrakcyjne.
      1. Dr Małgorzata Tatarczak-Michalewska:
         Optymalizacja ekstracji i analizy chromatograficznej naturalnych i syntetycznych związków o działaniu tuberkulostatycznym. Analiza ilościowa metodą TLC i HPLC.
      2. Mgr Magdalena Pizoń:
         Oznaczanie leków oraz nowych związków organicznych w materiale biologicznym. Różne metody ekstrakcji i przygotowania próbek do analizy HPLC.

1. Analysis of new potential anticonvulsant compounds in mice brain tissue by SPE/HPLC/DAD. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, MAGDALENA PIZOŃ, TOMASZ PLECH, JAROGNIEW ŁUSZCZKI. J. Chromatogr. B [online] 2012 vol. 909, s. 26-33, bibiogr.
2. Application of perfluorinated acids as ion-pairing reagents for reversed-phase chromatography and retention-hydrophobicity relationships studies of selected beta-blockers. [AUT.] JOLANTA FLIEGER. J. Chromatogr. A 2010 vol. 1217 nr 4, s. 540-549, bibliogr. poz. 22.
3. Application of the synthetised chelating stationary phase to the analysis of metals in Lentinula edodes (BERK.). [AUT.] ANNA BŁAŻEWICZ, JADWIGA TURŁO, RYSZARD KOCJAN. Fresenius Environ. Bull. 2010 vol. 19 nr 4, s. 594-598, bibliogr.
4. A preliminary study on the effect of mineralization parameters on determination of metals in Viscum album species. [AUT.] ELIZA BLICHARSKA, ŁUKASZ KOMSTA, RYSZARD KOCJAN, ANNA GUMIENICZEK, ARTUR ROBAK. Centr. Eur. J. Chem. 2010 vol. 8 nr 2, s. 264-268, bibliogr. poz. 28.
5. Chemometric processing of ion chromatograms – application to comparative analysis of Polish bottled mineral and spring waters. [AUT.] ELIZA BLICHARSKA, ŁUKASZ KOMSTA, RYSZARD KOCJAN, ANNA GUMIENICZEK, AGNIESZKA WIŚNIEWSKA. Pol. J. Environ. Stud. 2010 vol. 19 nr 5, s. 1071-1075, bibliogr. poz. 21.
6. Comparison of chaotropic salt and ionic liquid as mobile phase additives in reversedphase high-performance liquid chromatography of biogenic amines. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, ANNA CZAJKOWSKA-ŻELAZKO. J. Sep. Sci. 2011 vol. 34 nr 7, s. 733-739, bibliogr.
7. Determination of cadmium, cobalt, copper, iron, manganese and zinc in thyroid glands of patients with diagnosed nodular goitre using ion chromatography. [AUT.] ANNA BŁAŻEWICZ, WOJCIECH DOLLIVER, SUCEIL SIVSAMMYE, APEKSHA DEOL, RAJINDER RANDHAWA, GRAŻYNA ORLICZ-SZCZĘSNA, REMIGIUSZ BŁAŻEWICZ. J. Chromatogr. B 2010 vol. 878 nr 1, s. 34-38, bibliogr. poz. 30.
8. Determination of oleanolic and ursolic acid in bilberries (Vaccinium myrtillus L.). [AUT.] MAGDALENA WÓJCIAK-KOSIOR, RENATA NOWAK, ANNA SOKOŁOWSKA-KRZACZEK, WIOLETA PIETRZAK, IRENEUSZ SOWA, RYSZARD KOCJAN. Curr. Iss. Pharm. Med. Sci. 2012 vol. 25 nr 2, s. 146-148, bibliogr.
9. Effect of different extraction techniques on quantification of oleanolic and ursolic acid in Lamii albi flos. [AUT.] MAGDALENA WÓJCIAK-KOSIOR, IRENEUSZ SOWA, RYSZARD KOCJAN, RENATA NOWAK. Ind. Crop. Prod. 2013 vol. 44, s. 373-377, bibliogr. poz. 46.
10. Identification of ionic liquid components by RP-HPLC with diode array detector using chaotropic effect and perturbation technique. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, ANNA CZAJKOWSKA-ŻELAZKO. J. Sep. Sci. 2012 vol. 35 nr 2, s. 248-255, bibliogr. poz. 41.
11. Improvement of chiral discrimination of acidic enantiomers on teicoplanin stationary phase by the use of chaotropic effect. [AUT.] J[OLANTA] FLIEGER. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2009 vol. 32 nr 7, s. 948-963, bibliogr. poz. 37.
12. Influence of inorganic mobile phase additives on the retention and separation efficiency of selected amino acids in thin-layer chromatography on cellulose layers. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, MAŁGORZATA TATARCZAK. J. Chromatogr. Sci. 2008 vol. 46 nr 6, s. 565-573, bibliogr. poz. 23.
13. Ionic liquids as mobile phase additives in reversed-phase high performance liquid chromatography. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, ANNA CZAJKOWSKA-ŻELAZKO. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2011 vol. 34 nr 18, s. 2224-2242, bibliogr. poz. 34.
14. Ionic liquids as surfactants in micellar liquid chromatography. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, AGATA SIWEK, MAGDALENA PIZOŃ, ANNA CZAJKOWSKA-ŻELAZKO. J. Sep. Sci. [online] 2013, ss. 21, bibliogr. poz. 36.
15. Ionic liquids in reversed-phase high-performance liquid chromatography of phenolic acids on different stationary phases. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, ANNA CZAJKOWSKA-ŻELAZKO. Anal. Lett. 2012 vol. 45 nr 1, s. 63-74, bibliogr. poz. 34.
16. Properties of chelating sorbent prepared by modification of silica gel with polyaniline and Acid Alizarin Violet N. [AUT.] I[RENEUSZ] SOWA, M[AGDALENA] PIZOŃ, R[YSZARD] ŚWIEBODA, R[YSZARD] KOCJAN, D[OMINIKA] ZAJDEL. Sep. Sci. Tech. 2012 vol. 47 nr 8, s. 1194-1198, bibliogr. poz. 12.
17. Relationship between sodium selenite concentration in culture media and heavy metal uptake by Lentinula edodes (Berk.) in mycelial cultures [AUT.] J. TURŁO, B. GUTKOWSKA, F. HEROLD, A[NNA] BŁAŻEWICZ, R[YSZARD] KOCJAN. Fresenius Environ. Bull. 2009 vol. 18 nr 7, s. 1035-1038
18. Silica gel modified with polyaniline as a stationary phase in the ion chromatography of nitrate(III) and nitrate(V) ions. [AUT.] I[RENEUSZ] SOWA, D[OMINIKA] ZAJDEL, R[YSZARD] KOCJAN, M[AGDALENA] PIZOŃ, M[AGDALENA] WÓJCIAK-KOSIOR. Acta Chromatogr. 2013 vol. 25 nr 3, s. 1-7, bibliogr.
19. Usefulness of chaotropic salt additive in RP-HPLC of organic nonionized compounds. [AUT.] JOLANTA FLIEGER, AGATA SIWEK, MAGDALENA PIZOŃ. J. Sep. Sci. 2013 vol. 36 nr 3, s. 469-476, bibliogr. poz. 31.
20. Voltammetric determination of betulinic acid at lead film electrode after chromatographic separation in plant material. [AUT.] K. TYSZCZUK-ROTKO, M[AGDALENA] WÓJCIAK-KOSIOR, I[RENEUSZ] SOWA. Anal. Biochem. 2013 vol. 436 nr 2, s. 121-126, bibliogr. poz. 37.

• Farmacja 2019-2020. Regulamin pracowni analizy instrumentalnej
• Farmacja 2019-2020. Rozkład zajęć z Analizy Instrumentalnej
• Farmacja 2019-2020. zakres tematyczny
• Harmonogram - Kosmetologia
• Plan Ćwiczeń z Analizy Klasycznej dla Studentów I roku Farmacji
• Plan ćwiczeń z Chemii Analitycznej dla Studentów Analityki Medycznej
• Regulamin Pracowni Analizy Ilościowej Klasycznej dla Studentów I roku Farmacji
• Regulamin Pracowni Chemii Analitycznej dla Studentów Analityki Medycznej
• Regulamin Pracowni Kosmetologia