Uniwersytet Medyczny w Lublinie

1. Wykłady i ćwiczenia z biochemii dla studentów III roku farmacji.
2. Wykłady i ćwiczenia z biologii molekularnej dla studentów III roku farmacji.
3. Seminaria i ćwiczenia z biotechnologii dla studentów IV roku farmacji.
4. Seminaria w ramach bloków tematycznych dla studentów III, IV roku farmacji.
5. Prace magisterskie studentów V roku farmacji.
6. Wykłady i ćwiczenia z biochemii dla studentów II roku analityki medycznej.
7. Wykłady i ćwiczenia z biochemii klinicznej dla studentów III roku analityki medycznej.
8. Wykłady i ćwiczenia z biologii molekularnej dla studentów II roku analityki medycznej.
9. Seminaria z biotechnologii dla studentów III roku analityki medycznej.
10. Wykłady z toksykologii dla studentów II roku ratownictwa medycznego.
11. Wykłady i ćwiczenia z biochemii ogólnej i żywności dla studentów I roku dietetyki.
12. Wykłady i ćwiczenia z biochemii dla studentów I roku kosmetologii.
13. Wykłady i seminaria z biochemii dla słuchaczy Studiów Podyplomowych z Analityki Medycznej.
14. Wykłady i ćwiczenia z biochemii klinicznej dla słuchaczy Studiów Podyplomowych z Analityki Medycznej.
15. Wykłady i seminaria z biologii molekularnej dla słuchaczy Studiów Podyplomowych z Analityki Medycznej.

Wydane skrypty do ćwiczeń

1. Sawicki R., Ginalska G. Biologia molekularna Praktikum. Lublin 2007, Wydawnictwo Bestprint s.c.; s. 1-53; ISBN 978-83-60702-21-5.
2. Sawiniec J., Swatko-Ossor M., Paradowska K., Ginalska G. Biochemia Praktikum. Lublin 2008, Wydawnictwo Bestprint s.c.; s. 1-128; ISBN 978-83-60702-28-4.

• Regulamin zajęć z biochemii dla studentów kosmetologii I roku 2019/2020
• Sylabus – Biochemia (rok akademicki rozpoczynający cykl kształcenia 2019-2022)

Badania prowadzone w Katedrze Biochemii i Biotechnologii mają znaczenie w zakresie ochrony zdrowia, a w szczególności w obszarze medycyny regeneracyjnej. Dotyczą one głównie modyfikacji materiałów wszczepiennych takich jak protezy naczyniowe, cewniki urologiczne, nici chirurgiczne oraz ceramika hydroksyapatytowa i mają na celu nadanie tym materiałom właściwości przeciwbakteryjnych. Najbardziej spektakularnym sukcesem badań jest wytworzenie innowacyjnego dwufazowego, mikro- i makroporowatego kompozytu o wysokiej poręczności chirurgicznej i o niektórych właściwościach zbliżonych do naturalnych kości człowieka. Jest to biomateriał, który może być wykorzystany jako materiał kościozastępczy do wypełniania ubytków kostnych powstałych w wyniku urazów mechanicznych lub procesów chorobowych. Wynalazek jest chroniony przez dwa patenty krajowe i jedno zgłoszenie patentowe w Europejskim Urzędzie Patentowym. W celu komercjalizacji tych wynalazków na potrzeby ochrony zdrowia ludzkiego została powołana w maju 2011 roku spółka typu spin-off,  Medical Inventi Spółka z o.o., jako biznesowa inicjatywa Uniwersytetu Medycznego w Lublinie autorów patentów z Katedry Biochemii i Biotechnologii oraz prywatnego kapitału. Aktualnie Katedra Biochemii i Biotechnologii oraz Spółka Medical Inventi prowadzi eksperymenty implantacyjne biomateriału na pacjentach Kliniki Chirurgii Małych Zwierząt Wydziału Medycyny Weterynaryjnej w UP Lublinie oraz na zwierzętach laboratoryjnych. W 2012 roku rozpoczęto badania eksperymentalne dotyczące implantacji „sztucznej kości” podczas zabiegów stomatologicznych u pacjentów Katedry i Zakładu Chirurgii Stomatologicznej UM w Lublinie, a w 2013 roku badania eksperymentalne dotyczące implantacji wymienionego materiału u pacjentów Katedry i Kliniki Chirurgii Urazowej i Medycyny Ratunkowej UM w Lublinie.

Inne obszary badawcze

1. Ocena toksyczności modyfikowanych biomateriałów wobec komórek ludzkich w hodowlach in vitro stacjonarnych i dynamicznych.
2. Ocena właściwości przeciwbakteryjnych i przeciwprątkowych oraz toksyczności substancji organicznych syntezowanych de novo.
3. Określanie wpływu subinhibicyjnych stężeń substancji czynnych na ekspresję genów Staphylococcus epidermidis odpowiedzialnych za kolonizację biomateriałów wszczepialnych.
4. Ocena właściwości przeciwnowowtworowych substancji  roślinnych oraz organicznych syntezowanych de novo.
5. Określanie udziału genów w syntezie związków polisacharydowych lub białkowych tworzących biofilm bakteryjny.
6. Badanie roli biologicznej enzymów bakteryjnych w biosyntezie egzopolisacharydu odpowiedzialnego za adhezje bakterii do biomateriałów medycznych.

Aparatura w jednostce

1. Pracownia biologii molekularnej
   1. robot pipetujący,
   2. termocyklery klasyczne i czasu rzeczywistego,
   3. czytnik płytek uv-vis, fluorescencja, luminescencja,
   4. system archiwizacji żeli agarozowych.
2. Pracownia biomateriałów
   1. Spektroskop MIR Vertex 70,
   2. Mikroskop skanujący Hyperion 3000,
   3. Detektory MCT i FPA,
   4. Zestaw przystawek do spektroskopu i mikroskopu (GIR, ATR, DRIFT itd.),
   5. Mikroskop operacyjny do pobierania mikropróbek,
   6. Kriotom do przygotowywania mikroskrawków próbek do dalszej analizy).
3. Pracownia mikrobiologiczna
   1. Komory laminarne,
   2. Inkubatory hodowlane,
   3. Sprzęt sterylizujący,
   4. Mikroskopy (świetlny, z kontrastem Nomarskiego, fluorescencyjny, konfokalny).
4. Pracownia hodowli komórkowych
   1. komora z nawiewem laminarnym,
   2. 2 inkubatory CO2,
   3. nowoczesna wirówka,
   4. spektrofotometryczny czytnik mikropłytek,
   5. automatyczna płuczka do testów ELISA,
   6. automatyczny licznik komórek,
   7. aparatura umożliwiającą przeprowadzenie analiz  metodą Western-Blot,
   8. dewar do przechowywania komórek w ciekłym azocie,
   9. bioreaktor do hodowli komórek 3D,
   10. autoklaw.
5. Pracownia oceny ilościowej leków i substancji biologicznych
   1. 4-stanowiskowy aparat Sotax USP 4 z 4 rodzajami jednostek (do tabletek 12 mm, tabletek 22,6 mm, granul i proszków, implantów),
   2. Spektrofotometry UV-VIS do analizy ilościowej uwolnionego leku,
   3. Chromatograf HPLC do analizy ilościowej uwolnionego leku.

Współpraca badawcza

1. Akademia Górniczo-Hutnicza w Krakowie, Wydział Ceramiki i Materiałów Ogniotrwałych.
2. Politechnika Lubelska w Lublinie, Wydział Mechaniczny.
3. Politechnika Warszawska, Wydział Inżynierii Materiałowej.
4. Uniwersytet Przyrodniczy w Lublinie, Wydział Medycyny Weterynaryjnej.
5. UMCS w Lublinie, Wydział Biologii i Biotechnologii.
6. UMCS w Lublinie, Wydział Chemii.

Badanie uwalniania substancji czynnej z produktów opracowywanych przez Przedsiębiorstwo Wielobranżowe „VET-AGRO” Spółka z o.o. ul. Gliniana 32, 20-616 Lublin.

1. Ginalska G., Kowalczuk D., Osińska M. (2005). A chemical method of gentamicin bonding to gelatine-sealed prosthetic vascular grafts. Int. J. of Pharmaceutics. 288, 131-140. (IF=2,156)
2. Ginalska G., Osińska M., Uryniak A., Urbanik-Sypniewska T., Belcarz A., Rzeski W., Wolski A. (2005). Antibacterial activity of gentamicin-bonded gelatine-sealed polyterephtalate ethylene vascular prostheses. Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 29, 419-424. (IF=2,026)
3. Ginalska G., Kowalczuk D., Osińska M. (2007). Amikacin-loaded vascular prosthesis as an effective drug carrier. Int. J. of Pharmaceutics, 339, 39-46. (IF=2,408)
4. Kulesza P.J., Marassi R., Karnicka K., Wlodarczyk R., Miecznikowski K., Skunik M., Kowalewska B., Chojak M., Baranowska B., Kolary-Zurowska A., Ginalska G. (2007). Electrocatalysis and bioelectrocatalysis at nanostructured composite films. Rev. Adv. Mater. Sci. 15, 225-233. (IF=1,122)
5. Belcarz A., Ginalska G.. Kowalewska B., Kulesza P.J. (2008). Spring cabbage peroxidase potential in biocatalysis and bioelectrocatalysis. Phytochemistry, 69, s. 627-636. (IF=2,946)
6. Kowalewska B., Skunik M., Karnicka K., Miecznikowski K., Chojak M., Ginalska G., Belcarz A., Kulesza P.J. (2008). Enhancement of bio-electrocatalytic oxygen reduction at the composite film of kobalt porphyrin immobilized within the carbon nanotube-supported peroxidase enzyme. Electrochimica Acta, 53, s. 2408-2415. (IF=3,078)
7. Nazaruk E., Smoliński S., Swatko-Ossor M., Ginalska G., Fiedurek J., Rogalski J., Bilewicz R. (2008). Enzymatic biofuel cell based on electrodes modified with lipid liquid-crystalline cubic phase. J. Power Sources, 183, 533-538. (IF=3,477)
8. Belcarz A., Ginalska G., Zalewska J., Rzeski W., Ślósarczyk A., Kowalczuk D., Godlewski P., Niedźwiadek J. (2009). Covalent coating of hydroxyapatite by keratyn stabilizes gentamicin release. J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater. 89B, 102-113. (IF=2,706)
9. Osińska Jaroszuk M., Ginalska G., Belcarz A., Uryniak A. (2009). Vascular prostheses with covalently bound gentamicin and amikacin reveal superior antibacterial properties than silver-impregnated ones – An in vitro study. Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 38, 697-706. (IF=2,919)
10. Łoś R., Sawicki R., Juda M., Stankevič M., Rybojad P., Sawicki M., Malm A., Ginalska G. (2010). A comparative analysis of phenotypic and genotype methods for the determination of the biofilm-forming abilities of Staphylococcus epidermidis. FEMS Microbiol. Lett. 310, 97-103. (IF=2,199)
11. Nazaruk E., Sadowska K., Biernat J.F., Rogalski J., Ginalska G., Bilewicz R. (2010). Enzymatic electrodes nanostructured with functionalized carbon nanotubes for biofuel cell application. Anal. Bioanal. Chem., 398, 1651-1660. (IF=3,480)
12. Wielbo J., Golus J. Marek-Kozaczuk M., Skorupska A. (2010). Symbiosis-stage associated alterations in quorum sensing autoinducer molecules biosynthesis in Sinorhizobium meliloti. Plant Soil 329, 399-410. (IF=2,517)
13. Belcarz A., Bieniaś J. Surowska B., Ginalska G. (2010). Studies of bacterial adhesion on TiN, SiO₂-TiO₂ and hydroxyapatite thin layer deposited on titanium and Ti6A14V alloy for medical applications. Thin Solid Films, 519, 797-803. (IF=1,727)
14. Pitucha M., Polak B., Swatko-Ossor M., Popiołek Ł, Ginalska G. (2010). Determination of lipophilicity of some new derivatives of thiosemicarbazide and 1,2,4-triazoline-5-thione with potential antituberculosis activity. Croatia Chemica Acta, 83(3), 299-306. (IF=0,805)
15. Kowalczuk D., Ginalska G., Golus J. (2010). Characterization of the developer antimicrobial urological catheters. Int. J. of Pharmaceutics, 402, 175-183. (IF=2,962)
16. Kowalczuk D., Ginalska G., Przekora A. (2011). The cytotoxicity assessment of the novel latex urinary catheter with prolonged antimicrobial activity. J. Biomed. Mater. Res. 98A (2), 222-228. (IF=2.625)
17. Roguska A., Belcarz A., Piersiak T., Pisarek M., Ginalska G., Lewandowska M. (2012). Evaluation of the antibacterial activity of Ag-loaded TiO2 nanotubes. Eur. J. Inorg. Chem., 32, 5199-5206. (IF=3.049)
18. Kowalczuk D., Ginalska G., Piersiak T., Miazga-Karska M. (2012). Prevention of biofilm formation on urinary catheters: Comparison of the sparfloxacin-treated long-term antimicrobial catheters with silver-coated ones. J. Biomed Mater. Res. B Appl. Biomater.,100B, 1874-1882. (IF=2.147)
19. Kowalczuk D., Gowin E., Miazga-Karska M. (2012). Quantitative evaluation of sparfloxacin binding to urological catheter surfaces. Pharmazie 67 (1), 20-24. (IF=1.006)
20. Smolarz D., Swatko-Ossor, Ginalska G., Medyńska E. (2013). Antymycobacterial effect of extract and its components from Rheum rhaponticum. J. AOAC Int. 96 (1), 155-160. (IF=1.99)
21. Belcarz A., Ginalska, Pycka T., Zima A., Ślósarczyk A., Polkowska I., Paszkiewicz Z., Piekarczyk W. (2013). Application of β-1,3-glucan in production of ceramics-based elastic composite for bone repair. Centr. Eur. J. Biol. 8 (6), 534-548. (IF=1,000)
22. Golus J., Stankević M., Sawicki R., Łoś R., Malm A. (2013). Quantitative analysis of biofilm formed on vascular prostheses by Staphylococcus epidermidis with different ica and aap genetic status. Int. J. Artif. Organs,36 (2), 105-112. (IF=1.861)

Patenty

1. Ginalska G., Uryniak A., Łobarzewski J., Osińska M. (2009). „Sposób immobilizacji antybiotyków na stałych matrycach, zwłaszcza antybiotyków zawierających w swojej budowie komponent cukrowy”. Patent PL Nr 203306
2. Ginalska G., Uryniak A., Łobarzewski J., Osińska M. (2009). „Sposób immobilizacji antybiotyków zawierających I-rzędowe grupy aminowe ze stałymi matrycami pokrytymi białkiem”. Patent PL Nr 201383
3. Belcarz A., Ginalska G., Ślósarczyk A., Paszkiewicz Z. (2009). „Kompozyt bioaktywny oraz sposób wytwarzania kompozytu bioaktywnego”. Biuletyn Urzędu Patentowego nr. 21 (934) s. 4. Patent PL Nr 387872
4. Szacoń E., Tkaczyński T., Matosiuk D., Kleinrok Z., Jagiełło-Wójtowicz E., Tutka P., Chodkowska A., Sawiniec J. (2009). „Nowe pochodne arylosulfonyloamino-1,4,5,6-tetrahydropirymidyny oraz sposób ich wytwarzania”. Patent PL Nr 203255
5. Kowalczuk D., Ginalska G. (2009). „Sposób otrzymywania przeciwbakteryjnej matrycy przez immobilizację chemioterapeutyku na bioaktywnej powierzchni”. Patent PL Nr 389488
6. Belcarz A., Ginalska G., Ślosarczyk A., Paszkiewicz Z. (2010). Bioactive composite and process for the production of the bioactive composite. Patent Cooperative Treaty (PCT), No PCT/PL2010.050015
7. Belcarz A., Ginalska G., Polkowska I., Szyszkowska A., (2012). „Kompozyt bioaktywny zawierający lek przeciwbakteryjny oraz sposób jego wytwarzania”. Patent PL Nr 212866
8. Kowalczuk D., Ginalska G. (2012). „Sposób otrzymywania przeciwbakteryjnego biomateriału przez immobilizację na jego powierzchni substancji przeciwbakteryjnej”. Patent PL Nr 212866
9. Pitucha M., Ginalska G., Swatko-Ossor (2012). Nowe zastosowanie medyczne N-podstawionych pochodnych 3-amino-4-fenylo-5-okso-pirazolinokarboksamidu. Zgłoszenie patentowe z dnia 23 maja 2012 roku, Nr P.399283

Proponowane opatentowane rozwiązania innowacyjne.

• Program o nauce u naukowcach i uczelniach Lubelszczyzny – odcinek 1 nadany 22 lutego 2013 roku; dotyczy m.in. badań prowadzonych w Katedrze Biochemii i Biotechnologii UM w Lublinie.